{"id":9957,"date":"2024-05-20T08:16:58","date_gmt":"2024-05-20T08:16:58","guid":{"rendered":"https:\/\/www.hnjournal.net\/?page_id=9957"},"modified":"2024-05-20T08:17:02","modified_gmt":"2024-05-20T08:17:02","slug":"5-5-29","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/5-5-29\/","title":{"rendered":""},"content":{"rendered":"

<\/p>\n\n\n

Production in vitro et caract\u00e9risation physique et chimique de La \u201cSpiruline (Arthrospira Platensis) dans l’Etat de Laghouat<\/strong><\/p>\n

Benaya lalia1 <\/sup> Benaya fatima2<\/sup><\/strong><\/p>\n

1 <\/sup>Universit\u00e9 Amar Teledji Laghouat. Laboratoire de biologie\u00a0\u00a0\u00a0\u00a0 Email<\/strong>\u00a0:benayalalia1@gmail<\/p>\n

2 <\/sup>Centre universitaire Sharif Bouchoucha Aflou . Laboratoire d’\u00e9tudes juridiques et \u00e9conomiques\u00a0\u00a0\u00a0\u00a0 Email :<\/strong> f.benaya@cu-aflou.edu.dz<\/p>\n

HNSJ, 2024, 5(5); https:\/\/doi.org\/10.53796\/hnsj55\/29<\/p>\n

Download<\/a><\/p>\n

Publi\u00e9 le 01\/05\/2024 re\u00e7u au 01\/04\/2024 Accept\u00e9 le 09\/04\/2024 <\/strong><\/p>\n

R\u00e9sum\u00e9\u00a0<\/strong><\/p>\n

Le travail pr\u00e9sente une contribution \u00e0 \u00e9tudie la possibilit\u00e9 de produire in-vitro une esp\u00e8ce de micro-algue et de l\u2019\u00e9laboration d\u2019une fiche technique concernant les facteurs d\u00e9terminants des conditions exp\u00e9rimentales et le degr\u00e9 \u00e9nerg\u00e9tique de l\u2019algue.<\/p>\n

Les r\u00e9sultats obtenus ne a permis de d\u00e9terminer les limites de l\u2019optimum (pr\u00e9f\u00e9rendum) o\u00f9 la temp\u00e9rature moyenne \u00e9tait 34\u00b0C et le pH moyen \u00e9gal \u00e0 10. La salinit\u00e9 de l’eau \u00e9tait lorsque devient plus \u00e9lev\u00e9e, la culture de spiruline \u00e9tait r\u00e9ussie et facile.<\/p>\n

L\u2019analyse de la composition biochimique de l\u2019algue nous \u00e0 montrer que notre souche (Arthospira platensis) pr\u00e9sente un taux de prot\u00e9ine brute \u00e9gale \u00e0 43.78% et un taux de glucide de 17.1%.<\/p>\n

Vu l\u2019importance de sa composition \u00e9nerg\u00e9tique, il est le temps de pens\u00e9 a d\u00e9velopp\u00e9 cette fili\u00e8re des activit\u00e9s et de culture en Laghouat.<\/p>\n

Mots Cl\u00e9s: <\/strong>Spiruline, culture in-vitro, physico-chimiques, Biomasse, qualit\u00e9 biochimique, Laghouat<\/p>\n

Research Article <\/strong><\/p>\n

In vitro production and physical and chemical characterization of \u201cSpirulina (Arthrospira Platensis) in the State of Laghouat<\/strong><\/p>\n

Abstract <\/strong><\/p>\n

The work presents a contribution to study the possibility of producing in-vitro a species of micro-algae and the elaboration of a technical sheet concerning the determining factors of the experimental conditions and the energetic degree of the seaweed.<\/p>\n

The results obtained did not make it possible to determine the limits of the optimum (preferendum) where the average temperature was 34 \u00b0 C and the average pH equal to 10. The salinity of the water was when becomes higher, the spirulina culture was successful and easy.<\/p>\n

The analysis of the biochemical composition of the alga shows us that our strain (Arthospira platensis) has a crude protein level equal to 43.78% and a content of 17.1%.<\/p>\n

Given the importance of its energy composition, it is time to think developed this sector of activities and culture in Laghouat.<\/p>\n

Key Words: <\/strong>Spirulina, In-vitro culture, Physicochemical, Biomass, Biochemical quality, Laghouat.<\/p>\n

Introduction<\/strong><\/p>\n

La production alimentaire a soulev\u00e9 de nombreux probl\u00e8mes, en particulier ces derniers temps, qui ont suscit\u00e9 une grande controverse caus\u00e9e par une p\u00e9nurie de production alimentaire, l’incapacit\u00e9 de r\u00e9pondre aux besoins des consommateurs et le manque de nourriture pour eux, entra\u00eenant la faim, la malnutrition et la propagation des maladies et des \u00e9pid\u00e9mies dans de nombreux pays du monde.<\/p>\n

Pour r\u00e9duire ces probl\u00e8mes, il existe d’autres solutions. Pour \u00e9viter ces probl\u00e8mes, il faut pr\u00eater attention aux sources non traditionnelles, c’est-\u00e0-dire celles qui n’ont pas \u00e9t\u00e9 exploit\u00e9es ou qui ont \u00e9t\u00e9 mal exploit\u00e9es jusqu’\u00e0 pr\u00e9sent. Parmi les ressources recommand\u00e9es, les plus rentables et les plus utiles, figure la culture de micro algues, comme la spiruline. Ce sont les cyanobact\u00e9ries qui ont longtemps attir\u00e9 l’attention de nombreux chercheurs en tant que sources de prot\u00e9ines et d’autres substances (Kihlberg, 1972 dans Rao, 1981).<\/strong><\/p>\n

Notre travail cherche \u00e0 r\u00e9pondre aux questions suivantes :<\/p>\n

La possibilit\u00e9 et comment mettre en \u0153uvre la production de spiruline \u00e0 travers l’installation en laboratoire d’une ferme aquacole avec la d\u00e9termination des facteurs physiques et chimiques et du milieu de culture appropri\u00e9s.<\/p>\n

Tester la valeur \u00e9nerg\u00e9tique de cette spiruline produite dans des conditions de laboratoire universitaire.<\/p>\n

Pour cette raison, la probl\u00e9matique de recherche s\u2019articulait autour de deux parties :<\/p>\n

Le premier partie : <\/strong>Mat\u00e9riels et M\u00e9thodes<\/p>\n

Le deuxi\u00e8me partie\u00a0: <\/strong>R\u00e9sultats et Discussions<\/p>\n

le premier partie : Mat\u00e9riels et M\u00e9thodes <\/strong><\/p>\n

.1Choix et int\u00e9r\u00eat du microorganisme <\/strong><\/p>\n

La spiruline est un microorganisme exceptionnel, ayant de multiples utilit\u00e9s agroalimentaire, pharmaceutique, \u00e9cologique et biotechnologique.<\/p>\n

.2Le but <\/strong><\/p>\n

L\u2019objectif de ce projet est de produire ce type d\u2019algue appel\u00e9 spiruline et de l\u2019utiliser comme composant de base dans les cosm\u00e9tiques en raison de ses composants essentiels : prot\u00e9ines \u00e0 70%, antibiotiques et antioxydants et compl\u00e9ment alimentaire pour les sportive<\/p>\n

.3 Station d\u2019\u00e9tude<\/strong><\/p>\n

Toutes les exp\u00e9rimentations \u00e0 savoir : installation de l\u2019incubateur, pr\u00e9paration du milieu de culture, mise en culture et test biochimique, sont tous r\u00e9alis\u00e9 au niveau du laboratoire de biologie de l\u2019Universit\u00e9 Amar Thlidji-Laghouat.<\/p>\n\n\n\n\n
\n

<\/p>\n<\/td>\n

\n

<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

A<\/strong> : Station g\u00e9ographique de Laghouat<\/p>\n<\/td>\n

\n

B<\/strong>: Localisation du lieu d\u2019exploitation<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n

Figure 01<\/strong> : Pr\u00e9sentation de la zone d\u2019\u00e9tude<\/p>\n

4 .M\u00e9thodologie <\/strong><\/p>\n

Dans le but de la r\u00e9alisation d\u2019une culture in-vitro nous avons pr\u00e9par\u00e9s tous les moyens exp\u00e9rimentaux \u00e0 savoir, l\u2019appareillage, l\u2019eau de forage ,la souche m\u00e8re de spiruline et les produits chimiques.<\/p>\n

5. La qualit\u00e9 de l\u2019eau utilis\u00e9e<\/strong><\/p>\n

\"C:\\Users\\pc\\Desktop\\435489049_1641718426659639_8004514800033801549_n.jpg\" Afin de r\u00e9alise notre exp\u00e9rimentation au niveau de laboratoire, nous avons utilis\u00e9e l\u2019eau de forage, et le tableau ci-dessous pr\u00e9sentes r\u00e9sultats de l\u2019analyse<\/p>\n

physico-chimique : Tableau 01<\/strong> : R\u00e9sultats d\u2019analyse d\u2019eau forage<\/p>\n

6.Mat\u00e9riel utilis\u00e9<\/strong><\/p>\n

\"C:\\Users\\pc\\Desktop\\435699809_1580338472760432_4486650592116597643_n.jpg\"6.1\/ Installation de l\u2019aquarium<\/strong><\/p>\n

Figure 02\u00a0:<\/strong> Pr\u00e9paration de l\u2019aquarium<\/p>\n

\"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436340992_794591899256321_2745001235276416100_n.jpg\"6.2\/ Mat\u00e9riel de laboratoire <\/strong><\/p>\n

Figure 03<\/strong>: les mat\u00e9riaux utilis\u00e9s au laboratoire<\/p>\n

6.3 \/Les produits chimique<\/strong><\/p>\n

Pr\u00e9paration des produits chimiques et des solutions<\/p>\n

<\/p>\n

Figure 04<\/strong> : Les produits chimiques utilis\u00e9s dans la pr\u00e9paration de Milieu de culture de Jourdan<\/p>\n

6.4 \/Conditions exp\u00e9rimentales<\/strong><\/p>\n

-Espace suffisant et propre.<\/p>\n

-A\u00e9ration,<\/p>\n

-Avoir un bon \u00e9clairage par l\u2019utilisation du papier aluminium sur les quatre fa\u00e7ades.<\/p>\n

-Temp\u00e9rature ambiante<\/p>\n

<\/p>\n

figure 05<\/strong> : installation de l\u2019aquarium<\/p>\n

7. milieu de culture de Jourdan<\/strong><\/p>\n\n\n\n\n\n\n\n\n\n\n\n\n
\n

Pour 10 litre<\/strong><\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Les \u00e9l\u00e9ments<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

Quantit\u00e9 g\/l<\/strong><\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Bicarbonate de soude<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

160g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Nitrate de potassium<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

20g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Sel<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

10g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Sulfate de fer<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

0.1g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Sulfate de magn\u00e9sium<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

1g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Sulfate de potassium<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

5g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Chlorure de calcium<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

1g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

Phosphate d\u2019ammonium<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

\n

1g<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n

<\/strong><\/p>\n

.<\/p>\n

figure 06: <\/strong>Les diff\u00e9rentes \u00e9tapes de pr\u00e9paration de milieu de culture<\/p>\n

8. Ensemencement<\/strong><\/p>\n

1\/ Pr\u00e9paration 1 litre de milieu de culture final (m\u00e9lange d\u2019eau+ produits chimique)<\/strong><\/p>\n

2\/ Mise en culture dans l\u2019aquarium<\/p>\n

3\/ Conditionnement et contr\u00f4le des param\u00e8tres (lumi\u00e8re, agitation, temp\u00e9rature et pH).<\/p>\n

<\/strong><\/p>\n

figure 07<\/strong> :les \u00e9tapes Ensemencement<\/p>\n

9.Agitation<\/strong><\/p>\n

Une agitation permettre aux cellules l\u2019acc\u00e8s aux nutriments et \u00e0 la lumi\u00e8re<\/p>\n

figure 08<\/strong>: Photo repr\u00e9sente l\u2019application de l\u2019agitation automatique<\/p>\n

10. \u00c9clairage<\/strong><\/p>\n

En plus \u00e0 l\u2019\u00e9clairement naturel nous avons install\u00e9s une source lumineuse pendant toute la p\u00e9riode de l\u2019exp\u00e9rimentation 24h\/24h.<\/p>\n

<\/p>\n

Figure 09<\/strong> : Installation d\u2019une source lumineuse<\/p>\n

11. R\u00e9coltes et filtration <\/strong><\/p>\n

Apr\u00e8s formation du bulle, nous avons observons la pr\u00e9sence d’une couche de spiruline \u00e0 la surface de l’eau, \u00e0 l\u2019aide d\u2019une cuill\u00e8re en r\u00e9cup\u00e8re en maximum la couche de la spiruline et filtres par des papiers filtr\u00e9 puis pla\u00e7ons dans des bo\u00eetes de P\u00e9tri.<\/p>\n

<\/p>\n

<\/p>\n

Figure 10:<\/strong> Les \u00e9tapes de r\u00e9colte et filtration de la biomasse de spiruline (originale)<\/p>\n

12. s\u00e9chage<\/strong><\/p>\n

c\u2019est une bonne fa\u00e7on de conserver la spiruline sur une longue p\u00e9riode\u00a0, on a fait essor\u00e9e et s\u00e9ch\u00e9e \u00e0 l\u2019air libre par des plaques en plastique pendant 24h<\/p>\n

<\/p>\n

Figure 11<\/strong>: Poudre de spiruline originale<\/p>\n

le deuxi\u00e8me partie : R\u00e9sultats et Discussions <\/strong><\/p>\n

Lorsque nous fournissons toutes les conditions favorables pour la production de spiruline (l\u2019eau du forage, Temp\u00e9rature et pH appropri\u00e9e et salinit\u00e9 mod\u00e9r\u00e9e), nous obtenons les r\u00e9sultats suivants.<\/p>\n

1. R\u00e9sultats de la phase initiale<\/strong><\/p>\n

Apr\u00e8s pr\u00e9paration milieu qui compos\u00e9e de spiruline et l\u2019eau de forage, aussi sel et bicarbonate de sodium comme des \u00e9l\u00e9ments du base pendant 1 mois pour leur d\u00e9velopper afin de commen\u00e7ons \u00e0 l’appliquer milieux de la culture du (Jourdan, 2006). Nous avons remarqu\u00e9 une \u00e9volution remarquable du changement de quantit\u00e9 et de couleur.<\/p>\n\n\n\n\n
\n

<\/p>\n<\/td>\n

\n

<\/p>\n<\/td>\n

\n

<\/p>\n<\/td>\n

\n

<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

\n

1er<\/sup> semaine<\/p>\n<\/td>\n

\n

2eme<\/sup> semaine<\/p>\n<\/td>\n

\n

3eme<\/sup> semaine<\/p>\n<\/td>\n

\n

4eme<\/sup> semaine<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n

Figure 12<\/strong> : R\u00e9sultat de la phase initiale a compt\u00e9<\/p>\n

A chaque fois nous avons remarqu\u00e9 changement de la couleur de la spiruline du vert fonc\u00e9 au vert clair et aussi notez que la quantit\u00e9 de spiruline augmente de mani\u00e8re relative remarquable.<\/p>\n

2.R\u00e9sultats de la phase finale <\/strong><\/p>\n

Cette phase c\u2019est une l\u2019\u00e9tape fondamentale de la prolif\u00e9ration de spiruline qui due \u00e0 la disponibilit\u00e9 de mat\u00e9riaux essentiels et des conditions n\u00e9cessaires \u00e0 leur d\u00e9veloppement.<\/p>\n

2.1\/ \u00c9volution des param\u00e8tres physico-chimiques<\/strong><\/p>\n

La temp\u00e9rature (T\u00b0C) et le potentiel Hydrog\u00e8ne (pH)sont les deux param\u00e8tres mesur\u00e9s syst\u00e9matiquement durant toute la p\u00e9riode de culture de Spiruline. Les valeurs enregistr\u00e9es sont r\u00e9capitul\u00e9es dans le tableau suivant.<\/p>\n

Tableau 03<\/strong> :\u00c9volution de la temp\u00e9rature et du pH des cultures de Spiruline<\/p>\n

\"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436483427_1007525780946325_1739889173645909404_n.jpg\"<\/p>\n

    \n
  • La temp\u00e9rature<\/strong><\/li>\n<\/ul>\n

    -Pour le mois mars la valeur maximale est de 34,5 \u00b0C et minimale de 33,4 \u00b0C<\/p>\n

    \"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436043328_1183754329286981_5772000408595886502_n.jpg\"<\/strong> -Pour mois d\u2019avril la valeur maximale est de 34,7 \u00b0C et minimale de 34,3\u00b0C<\/p>\n

    \"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436784339_960240108839505_473918657855272137_n.jpg\" Figure 13<\/strong> :\u00c9volution de la temp\u00e9rature in-vitrodurant le mois de mars<\/p>\n

    Figure 14<\/strong> :\u00c9volution de la temp\u00e9rature in-vitro durant le mois d\u2019Avril<\/p>\n

      \n
    • Le potentiel Hydrog\u00e8ne (pH) :<\/strong><\/li>\n<\/ul>\n

      Les r\u00e9sultats de notre mesure de pH montrent une valeur moyenne \u00e9gale \u00e0 10 qui refl\u00e8te un aspect alcalin des eaux de l\u2019aquarium.<\/p>\n

      \"C:\\Users\\pc\\Desktop\\3.jpg\" Figure 15<\/strong>: Variations des valeurs de mesures du pH pendant le mois de mars<\/p>\n

      \"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436498155_273873262481513_3935690064456790357_n<\/p>\n

      Figure 16<\/strong> : Variations des valeurs de mesures du pH pendante le mois d\u2019avril<\/p>\n

      <\/p>\n

      Figure 17<\/strong> : Observation macroscopique (\u0153il nue) des diff\u00e9rents aspects morphologiques couleur et la quantit\u00e9 de la spiruline (photo originale)<\/p>\n

      A chaque fois nous observant gr\u00e2ce au microscope optique les diff\u00e9rents changements de couleur de la spiruline .<\/p>\n

      <\/p>\n

      Figure 18<\/strong> : la spiruline observ\u00e9e au microscope optique (ObjectifX40)<\/p>\n

      3.2Estimation de la biomasse produite <\/strong><\/p>\n

      La biomasse de la Spiruline analys\u00e9e a \u00e9t\u00e9 r\u00e9colt\u00e9e chaque 2 semaine pendant toute la p\u00e9riode de culture in-vitro. Les valeurs correspondantes de la T\u00b0C, pH, la masse de la poudre ainsi la date ont \u00e9t\u00e9 effectu\u00e9s en parall\u00e8le.<\/p>\n

      Tableau 04<\/strong> : Les r\u00e9sultats des mesures de la temp\u00e9rature et du pH durant la r\u00e9colte de la biomasse<\/p>\n\n\n\n\n\n\n\n
      \n

      Dates<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      T\u00b0C<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      pH<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      Volume d’eau en (ml)<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      La masse en (gr)<\/strong><\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      14\/03\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      33,8<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      10,1<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      200<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      0.5<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      31\/03\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      33,5<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      10,39<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      200<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      1<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      11\/04\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      33,2<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      10,37<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      200<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      1.9<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      16\/04\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      34<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      40,41<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      200<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      2.5<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n\n\n\n\n
      \n

      <\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      <\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      <\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      <\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      14\/03\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      31\/03\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      11\/04\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      11\/04\/2019<\/strong><\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n

      Figure 19<\/strong> : Chronologie de l\u2019\u00e9volution de la biomasse de la spiruline<\/p>\n

      Apr\u00e8s le calcul, nous obtenons les r\u00e9sultats montr\u00e9s dans le tableau suivant et ceci apr\u00e8s l\u2019ach\u00e8vement de la production.<\/p>\n

      Tableau 06:<\/strong> Estimation de la biomasse s\u00e8che de la spiruline<\/p>\n\n\n\n\n\n
      \n

      Volume d’eau en ml<\/strong><\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      La masse en g<\/strong><\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      200<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      2.5<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n

      \n

      6000<\/p>\n<\/td>\n

      		\n

      75<\/p>\n<\/td>\n<\/tr>\n<\/tbody>\n<\/table>\n

      4.R\u00e9sultats de l\u2019analyse biochimique<\/strong><\/p>\n

      4.1\/Teneur en prot\u00e9ines<\/strong><\/p>\n

      La teneur en prot\u00e9ines brutes est l\u2019un des crit\u00e8res utilis\u00e9s pour \u00e9valuer la valeur nutritive d\u2019un aliment. L\u2019\u00e9valuation du taux de prot\u00e9ines brutes d\u2019algue Spiruline. par la m\u00e9thode de Kjeldhal (1883) r\u00e9v\u00e8le qu\u2019elle contient environ 43.78% de prot\u00e9ines. <\/strong> \"C:\\Users\\pc\\Desktop\\436355568_1644764632942814_5481750271756922406_n.jpg\"<\/p>\n

      Figure 20 : <\/strong>Taux de prot\u00e9ine de notre spiruline en comparaison avec les autres aliments<\/p>\n

      4.2\/Teneur en glucides<\/strong><\/p>\n

      L\u2019\u00e9valuation du taux de glucides totaux par la m\u00e9thode de Dubois et al (1956), indique que les glucides constituent globalement 15 \u00e0 25% de la mati\u00e8re s\u00e8che des spirulines(Jourdan, 1999).<\/p>\n

      La teneur de glucides dans notre travail est 17.1%. Cette valeur \u00e9tait excellente et tr\u00e8s importante pour le besoin du l\u2019homme et m\u00eame aussi pour l\u2019animal.<\/p>\n

      Conclusion<\/strong><\/p>\n

      Les r\u00e9sultats obtenus ne a permis de conclure :<\/p>\n

      – que la qualit\u00e9 de l\u2019eau, la temp\u00e9rature et le pH sont consid\u00e9r\u00e9 comme des facteurs essentiale pour le conditionnement in-vitro de la production de la spiruline car l\u2019eau de forage est l’une des facteurs les plus importants qui contr\u00f4lent le succ\u00e8s du milieu en raison de son impact direct sur la production.<\/p>\n

      – On peut dire aussi que plus la salinit\u00e9 de l’eau \u00e9tait \u00e9lev\u00e9e, plus l’application de la culture de spiruline \u00e9tait r\u00e9ussie et facile.<\/p>\n

      – Le r\u00f4le fondamental de la temp\u00e9rature et Le pH dans le d\u00e9veloppement et la prolif\u00e9ration de la spiruline.<\/p>\n

      – Nous avons pu d\u00e9terminer les limites de l\u2019optimum (pr\u00e9f\u00e9rendum) o\u00f9 la temp\u00e9rature et le pH sont responsables sur l\u2019une des processus de prolif\u00e9ration et la vitesse de croissance. Donc notre spiruline s\u2019accroitre mieux dans des temp\u00e9ratures moyennes de 34\u00b0C et un pH moyen de 10.<\/p>\n

      – L\u2019analyse de la composition biochimique de l\u2019algue nous \u00e0 montrer que notre souche (Arthospira plantais) pr\u00e9sente un taux de prot\u00e9ine brute \u00e9gale \u00e043.78% ; ce dernier consid\u00e9r\u00e9 comme un rendement faible en comparaison avec d\u2019autre souches et m\u00e9thodes de production. N\u00e9anmoins l\u2019estimation du taux de glucides indique une valeur tr\u00e8s motivante avec 17.1%.<\/p>\n

      R\u00e9f\u00e9rence Bibliographique<\/strong><\/p>\n

        \n
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      2. .H, (1993) La Spiruline, algue de vie. Bull. Inst. Oc\u00e9anog. Monaco, n\u00b0 sp\u00e9cial 12:7-11.<\/li>\n
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      6. Falquet, J., & Hurni, J. P. (1986). Spiruline: aspects nutritionnels. Flamant vert.<\/li>\n<\/ol>\n

        CH-1201 Gen\u00e8ve, Suisse. P. 1-16.<\/p>\n

          \n
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        2. Geitler .L, (1932). Cyanophyceae. In : Rabenhorst’s Kryptogamenflora von Deutschland, Tiruchirapalli, Inde.<\/li>\n
        3. Jourdan J.P. (1999).Cultivez votre spiruline : Manuel de culture artisanale, Gen\u00e9ve, PP85, 63.<\/li>\n
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        5. Jourdan J.P, (2006). Cultivez votre spiruline : manuel de culture artisanal .Publication Antenna Technologies.<\/li>\n
        6. Jourdan J.P. 2007. Manuel de culture de la Spiruline. Antenna<\/li>\n
        7. Technologies. Disponible sur:<\/li>\n<\/ol>\n

          http:\/\/www.antenna.ch\/documents\/manuelJourdan2o6l.pdf<\/p>\n

            \n
          1. Kihlberg R,1972. The microbe as a source of food. Annu. Rev. Microbiol P427, 466.<\/li>\n
          2. L\u00e9onard, J. (1968). Discovery, ecology and nutritional utilization of Spirulina platensis.<\/li>\n
          3. chimiques sur la connaissance et la photosynth\u00e8se de Spirulina maxima.Th\u00e8se de doctorat, Paris.<\/li>\n<\/ol>","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

            Production in vitro et caract\u00e9risation physique et chimique de La \u201cSpiruline (Arthrospira Platensis) dans l’Etat de Laghouat Benaya lalia1 Benaya fatima2 1 Universit\u00e9 Amar Teledji Laghouat. Laboratoire de biologie\u00a0\u00a0\u00a0\u00a0 Email\u00a0:benayalalia1@gmail […]<\/p>\n","protected":false},"author":2,"featured_media":0,"parent":0,"menu_order":0,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","template":"","meta":{"om_disable_all_campaigns":false,"_monsterinsights_skip_tracking":false,"_monsterinsights_sitenote_active":false,"_monsterinsights_sitenote_note":"","_monsterinsights_sitenote_category":0,"_joinchat":[],"footnotes":""},"class_list":["post-9957","page","type-page","status-publish","hentry"],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/9957","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/users\/2"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=9957"}],"version-history":[{"count":1,"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/9957\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":10007,"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/9957\/revisions\/10007"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/www.hnjournal.net\/en\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=9957"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}